水温对幼鲵生长影响的初步研究
发表时间:2017/11/26 00:00:00 作者:张红星 沈建忠 赵虎 王启军 浏览次数:2460
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大鲵幼体常称为幼鲵，是从稚鲵脱去外鳃完成了变态，转为以肺呼吸为主。依据幼鲵身体外部形态分化、内部器官发育以及生理机能的转变，整个幼鲵期是大鲵生长和性腺发育的快速时期［1 －3］，通过控制温度变化缩短幼鲵生长期［4］，对提高养殖效益和加快增殖放流有重要意义。
1 材料与方法
1. 1 试验动物
2009 年，从陕西省宁陕龙泉大鲵有限公司在2008 年所产的 6 491 尾稚鲵中，选取同一对雄鲵与雌鲵所产幼鲵 240 尾为试验动物，试验幼鲵挑选标准遵循 “六不要”: 规格大的不要、规格小的不要、畸形的不要、伤残的不要、不活泼的不要、体色有变异的不要。
1. 2 试验点
试验点是陕西省宁陕龙泉大鲵有限公司在宁陕东河流域的养殖场 ( 1 号点) ，水源是泉水; 原种场 ( 2 号点) ，水源是河水。
1. 3 主要设备
HOBO Water Temp Pro v2 水下温度数据采集器( 美国) ，光学 USB 基座 ( No. BASE － U － 4) ，HOBOware Pro 应用软件; U52 多参数水质分析仪( HORIBA，Janpan) ; GPSmap 60CSx ( GARMIN，台湾) ; JY501 电子天平 ( 上海浦春计量仪器有限公司) ; PIT 射频标记 ( TX1411SSL 12. 50mm X2. 07mm， 134. 2kHz ISO， 0. 1020g ) ， 注 射 器( BIO12. BPLT) ，读卡器。
1.4 试验方法
1. 4. 1 PIT 射频标记注射
PIT 射频标记芯片经 75% 酒精消毒，将其植入幼鲵尾部皮下 ( 1 枚/尾) ，采取纵向植入 ( 即与尾轴垂直方向) 。植入芯片后放在同一条件下进行跟踪观察，待无特异性反应且经读卡器检验可正常读取数据，随即开始试验。
1. 4. 2 幼鲵饲养条件
试验池规格为 1. 0 m × 1. 2 m × 0. 6 m，水深6 ～ 8 ㎝，各池进排水量相同 ( 为 3 L / h) 。每一试验池放养幼鲵 30 尾，主要投喂冰鲜小杂鱼，每天18∶ 00投喂，以当天晚上 24 ∶ 00 未吃完为准。每隔一天清刷一次饲养池。
1. 4. 3 幼鲵增重监测
1 号点和 2 号点两个试验点均在上坝河流域。各点分别设 4 个试验组，即 1 ～4 组为 1 号点，5 ～8 组为 2 号点，每组放试验幼鲵 30 尾。测定时间:2009 年 10 月 20 日—2010 年 7 月 30 日分为 3 个点( 2009 年 10 月 20 日; 2010 年 4 月 23 日; 2010 年7 月 30 日) 2 个阶段 ( 第一阶段: 2009 年 10 月 20日—2010 年4 月23 日; 第二阶段: 2010 年4 月23日—2010 年 7 月 30 日) 进行。
1. 4. 4 水温监测
HOBO Water Temp Pro v2 水下温度数据采集器置于水下并固定，设定采集时间为每小时整点采集，人工定期收集整理。测定地点选取两个位置，即 1 号点为养殖场 － 泉水，2 号点为原种场 － 河水，并对数据进行整理对比和分析。按照不同时间、不同地点对一年四季水温在各个季节的变化、季节之间的变化整理对比并分析。数据采集时间同体重增重测定时间。
1. 4. 5 水质监测
利用 U52 多参数水质分析仪 ( HORIBA) ，在上述两个时间段的三个时间点进行水质测量。采集地点亦同上。水质监测包括: 温度、pH、氧化还原电位、电导率、浊度、溶氧量、总溶解固体等。
1. 5 数据处理
利用 SPSS13. 0 软件，统计增重数据结果采用平均数 ± 标准差( mean ± SD) 表示。其余组间差异的处理采用方差检验。
2 结果
2. 1 幼鲵体重变化
平均增重与平均日增重能更好地显示对比结果。对幼鲵增重数据进行双因素方差分析，第一时间段与第二时间段平均日增重差异极显著，第二阶段平均日增重极显著高于第一阶段 ( P ＜ 0. 01) 。对 1 号点与 2 号点数据进行对比显示，1 号点 4 组之间增重差异不显著 ( P ＞0. 05) ，2 号点 4 组之间增重差异也不显著 ( P ＞ 0. 05) ，但 1 号点与 2 号点之间平均增重、平均日增重、特定生长率差异极显著 ( P ＜ 0. 01) ; 日平均增重结果与平均增重结果一致，见表 1 ～3。
2. 2 水温变化
对水温数据进行统计分析发现，第一阶段 1 号点平均温度极显著高于 2 号点 ( P ＜ 0. 01) 。水温第 3 期 张红星: 水温对幼鲵生长影响的初步研究75变化趋势为先下降后回升，最低温度出现在 12 月底至 1 月初，1 号点最低温度 6. 97 ℃，2 号点最低温度 0. 02 ℃，相差 6. 95 ℃。1 号点水温平均温度范围 8 ～ 16 ℃，2 号点水温平均温度范围 1 ～ 13℃ 。第二阶段 1 号点与 2 号点平均温度差异不显著( P ＞0. 05) 。温度逐步回升，平均温度范围 10 ～20℃ 。并且两个阶段综合看，1 号点平均温度极显著高于 2 号点( P ＜0. 01) ，1 号点较 2 号点水温波动较小，特别是第二阶段更为明显。见表 4 及图 2、3。
2. 3 水质变化
经对 1 号点和 2 号点的水质监测发现 1 号点较2 号点的水温变化差异较小; pH、氧化还原电位、浊度、溶氧变化相当; 从电导率和总溶解固体来看，1 号点较 2 号点要高，见表 5。
3 结论
大多数水生动物生活在最适水温中新陈代谢旺盛，食量大、生长快; 水温降低时机体神经激素分泌少，消化酶活性低，动能较差，且饵料生物也缺乏; 低于4 ℃，大多数生物停止摄食。水温高，促进新陈代谢，饲料利用率高，且增重率大［5 －6］。水温急剧升降，会导致生物发病和死亡。本试验结果表明: 总体 1 号点水温变化较 2 号点水温变化缓和，1 号点幼鲵平均增重和平均日增重极显著高于 2 号点。分析导致体重差异的原因，水温高，幼鲵摄食量增加，水温低较少摄食甚至不摄食，水温由低逐渐升高到适宜水温时幼鲵的生长速度加快，因此通过控温以缩短培养时间，提高增重效率。水质也是影响大鲵生长状况的一个关键因素［7 －8］。泉水流量稳定，水质周期性变化小。含有一定数量的化学成分、有机物，水温波动变化小，是培育大鲵的天然优质水源。可见，水温是影响幼鲵生长的重要因素。为了缩短养殖周期，减少越冬体重的自身消耗损失，可以通过提高水温来加快幼鲵的生长。
1 材料与方法
1. 1 试验动物
2009 年，从陕西省宁陕龙泉大鲵有限公司在2008 年所产的 6 491 尾稚鲵中，选取同一对雄鲵与雌鲵所产幼鲵 240 尾为试验动物，试验幼鲵挑选标准遵循 “六不要”: 规格大的不要、规格小的不要、畸形的不要、伤残的不要、不活泼的不要、体色有变异的不要。
1. 2 试验点
试验点是陕西省宁陕龙泉大鲵有限公司在宁陕东河流域的养殖场 ( 1 号点) ，水源是泉水; 原种场 ( 2 号点) ，水源是河水。
1. 3 主要设备
HOBO Water Temp Pro v2 水下温度数据采集器( 美国) ，光学 USB 基座 ( No. BASE － U － 4) ，HOBOware Pro 应用软件; U52 多参数水质分析仪( HORIBA，Janpan) ; GPSmap 60CSx ( GARMIN，台湾) ; JY501 电子天平 ( 上海浦春计量仪器有限公司) ; PIT 射频标记 ( TX1411SSL 12. 50mm X2. 07mm， 134. 2kHz ISO， 0. 1020g ) ， 注 射 器( BIO12. BPLT) ，读卡器。
1.4 试验方法
1. 4. 1 PIT 射频标记注射
PIT 射频标记芯片经 75% 酒精消毒，将其植入幼鲵尾部皮下 ( 1 枚/尾) ，采取纵向植入 ( 即与尾轴垂直方向) 。植入芯片后放在同一条件下进行跟踪观察，待无特异性反应且经读卡器检验可正常读取数据，随即开始试验。
1. 4. 2 幼鲵饲养条件
试验池规格为 1. 0 m × 1. 2 m × 0. 6 m，水深6 ～ 8 ㎝，各池进排水量相同 ( 为 3 L / h) 。每一试验池放养幼鲵 30 尾，主要投喂冰鲜小杂鱼，每天18∶ 00投喂，以当天晚上 24 ∶ 00 未吃完为准。每隔一天清刷一次饲养池。
1. 4. 3 幼鲵增重监测
1 号点和 2 号点两个试验点均在上坝河流域。各点分别设 4 个试验组，即 1 ～4 组为 1 号点，5 ～8 组为 2 号点，每组放试验幼鲵 30 尾。测定时间:2009 年 10 月 20 日—2010 年 7 月 30 日分为 3 个点( 2009 年 10 月 20 日; 2010 年 4 月 23 日; 2010 年7 月 30 日) 2 个阶段 ( 第一阶段: 2009 年 10 月 20日—2010 年4 月23 日; 第二阶段: 2010 年4 月23日—2010 年 7 月 30 日) 进行。
1. 4. 4 水温监测
HOBO Water Temp Pro v2 水下温度数据采集器置于水下并固定，设定采集时间为每小时整点采集，人工定期收集整理。测定地点选取两个位置，即 1 号点为养殖场 － 泉水，2 号点为原种场 － 河水，并对数据进行整理对比和分析。按照不同时间、不同地点对一年四季水温在各个季节的变化、季节之间的变化整理对比并分析。数据采集时间同体重增重测定时间。
1. 4. 5 水质监测
利用 U52 多参数水质分析仪 ( HORIBA) ，在上述两个时间段的三个时间点进行水质测量。采集地点亦同上。水质监测包括: 温度、pH、氧化还原电位、电导率、浊度、溶氧量、总溶解固体等。
1. 5 数据处理
利用 SPSS13. 0 软件，统计增重数据结果采用平均数 ± 标准差( mean ± SD) 表示。其余组间差异的处理采用方差检验。
2 结果
2. 1 幼鲵体重变化
平均增重与平均日增重能更好地显示对比结果。对幼鲵增重数据进行双因素方差分析，第一时间段与第二时间段平均日增重差异极显著，第二阶段平均日增重极显著高于第一阶段 ( P ＜ 0. 01) 。对 1 号点与 2 号点数据进行对比显示，1 号点 4 组之间增重差异不显著 ( P ＞0. 05) ，2 号点 4 组之间增重差异也不显著 ( P ＞ 0. 05) ，但 1 号点与 2 号点之间平均增重、平均日增重、特定生长率差异极显著 ( P ＜ 0. 01) ; 日平均增重结果与平均增重结果一致，见表 1 ～3。
2. 2 水温变化
对水温数据进行统计分析发现，第一阶段 1 号点平均温度极显著高于 2 号点 ( P ＜ 0. 01) 。水温第 3 期 张红星: 水温对幼鲵生长影响的初步研究75变化趋势为先下降后回升，最低温度出现在 12 月底至 1 月初，1 号点最低温度 6. 97 ℃，2 号点最低温度 0. 02 ℃，相差 6. 95 ℃。1 号点水温平均温度范围 8 ～ 16 ℃，2 号点水温平均温度范围 1 ～ 13℃ 。第二阶段 1 号点与 2 号点平均温度差异不显著( P ＞0. 05) 。温度逐步回升，平均温度范围 10 ～20℃ 。并且两个阶段综合看，1 号点平均温度极显著高于 2 号点( P ＜0. 01) ，1 号点较 2 号点水温波动较小，特别是第二阶段更为明显。见表 4 及图 2、3。
2. 3 水质变化
经对 1 号点和 2 号点的水质监测发现 1 号点较2 号点的水温变化差异较小; pH、氧化还原电位、浊度、溶氧变化相当; 从电导率和总溶解固体来看，1 号点较 2 号点要高，见表 5。
3 结论
大多数水生动物生活在最适水温中新陈代谢旺盛，食量大、生长快; 水温降低时机体神经激素分泌少，消化酶活性低，动能较差，且饵料生物也缺乏; 低于4 ℃，大多数生物停止摄食。水温高，促进新陈代谢，饲料利用率高，且增重率大［5 －6］。水温急剧升降，会导致生物发病和死亡。本试验结果表明: 总体 1 号点水温变化较 2 号点水温变化缓和，1 号点幼鲵平均增重和平均日增重极显著高于 2 号点。分析导致体重差异的原因，水温高，幼鲵摄食量增加，水温低较少摄食甚至不摄食，水温由低逐渐升高到适宜水温时幼鲵的生长速度加快，因此通过控温以缩短培养时间，提高增重效率。水质也是影响大鲵生长状况的一个关键因素［7 －8］。泉水流量稳定，水质周期性变化小。含有一定数量的化学成分、有机物，水温波动变化小，是培育大鲵的天然优质水源。可见，水温是影响幼鲵生长的重要因素。为了缩短养殖周期，减少越冬体重的自身消耗损失，可以通过提高水温来加快幼鲵的生长。
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